Immunoanalyses

Immunoanalyses


Les nouveaux développements thérapeutiques et l’avènement des biomarqueurs font largement appel à l’immunoanalyse : technique ultrasensible reposant sur l’interaction entre des anticorps et les analytes ciblés. Cependant les champs d’application de l’immunoanalyse sont extrêmement variés allant du domaine médical à l’agroalimentaire en passant par l’environnement.

Depuis de nombreuses années, l’équipe a acquis une expertise reconnue dans le développement dosages immunoenzymatiques plasmatiques et intracellulaires de différents médicaments anti-infectieux qui s’étend aujourd’hui à celui du dosage des protéines à l’état de trace ou des biomarqueurs environnementaux.

Nos recherches visent à une amélioration continuelle des méthodologies de dosage immunologiques existantes ainsi qu’à leur application dans plusieurs domaines de recherche.

Une des principales limitations de la plupart des dosages immunoenzymatiques réside dans le fait que ces analyses permettent la détection d’un seul analyte à la fois. Le but principal des projets en cours est de dépasser les limites existantes avec la mise au point de dosages multiplexés permettant la détection d’un grand nombre de composés en une seule analyse. Nous travaillons ainsi au développement d’une méthode innovante d’immunoanalyses multiplexées basée sur la technologie Luminex®. Ce type de méthodologie sera appliqué par exemple à l’étude des biomarqueurs en écotoxicologie dans le but d’améliorer l’évaluation de la toxicité des milieux aquatiques (ANR ProtéoGam).

En parallèle, nous travaillons au développement de dosages ultrasensibles pour la détection de protéines présentes à l’état de trace dans des céramiques datant du néolithique ancien afin de mieux appréhender l’usage des poteries à cette époque (ANR CIMO)

  • Zehnacker L., Nevers M.C., Sinou V., Creminon C., Parzy D., Parzy D., Azoulay S.* Development of sensitive direct chemiluminescent enzyme immunoassay for the determination of dihydroartemisinin in plasma Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2015, 25, 7823-30
  • Zehnacker L., Abe E., Mathez D., Alvarez J.C., Leibowitch J., Azoulay S.* Plasma and intracellular antiretroviral concentrations in HIV-infected patients under short cycles of antiretroviral therapy AIDS Research and Treatment, 2014, doi : 10.1155/2014/724958
  • Roucairol C., Azoulay S.*,. Nevers M.C., Golebiowski J., Creminon C., Grassi J., Burger A. *, Duval D.Design, synthesis and studies of triphosphate analogues for the production of anti AZT-TP antibodies Bioorg. Med. Chem. Lett. 2010, 987-990.
  • Roucairol, C., Azoulay, S.*,. Nevers, M.C., Creminon, C., Grassi, J., Burger, A. *, Duval D. Development of a competitive immunoassay for efavirenz : hapten design and validation studies Anal. Chim. Acta , 2007, 589, 142-149
  • epMotion 5075 Automate de pipetage Eppendorf
  • SpectraMax Plus 384, Lecteur de Microplate, Molecular Devices
  • Bio-Plex 200 Systems, Bio-Rad
  • BioLogic™ Low-Pressure Liquid Chromatography avec Fraction Collectors 2610, Bio-Rad
  • HPLC Waters Alliance 2695, Waters
  • Molecular Imager VersaDoc, Bio-Rad


Partenaires académiques :

  • Dr. Christophe Créminon, Ibitecs-SPI, CEA Saclay, France
  • Dr. Olivier Geffard, IRSTEA, Laboratoire d’écotoxicologie, Lyon, France
  • Dr. Jean Armengaud, CEA Marcoule, France
  • Pr. Daniel Parzy, UMR-MD3, Marseille, France
  • Dr. Martine Regert, CEPAM UMR7264, Nice, France

Partenaires industriels :

  • Dominique Parzy , K-Plan, Lyon, France

  • Dr. S. AZOULAY Université Nice Sophia Antipolis, U.F.R Sciences, Institut de Chimie de Nice, UMR CNRS 7272, 28 avenue de Valrose, 06108 Nice, Cedex 2, France
  • azoulay@unice.fr
  • +33492076115