Microscopie Imagerie Côte d'Azur
- Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire (IPMC) - Sophia Antipolis
-
PERSONNEL
Frédéric Brau
Responsable service Imagerie
brau@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89Sophie Abélanet
Ingénieur service Imagerie
abelanet@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89EQUIPEMENTS
Microscopie plein champ :
- Axioplan2 Imaging Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu N&B CCD Orca ER (piloté par µManager) - droit
- Axiovert200M Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
- Axio Observer Zeiss (2007) - Caméra EMCCD Cascade 512 Photometrics (piloté par MetaFluor)
Microscopie plein champ automatisée :
- Cytation 5 Biotek (2015) - Caméra Grasshopper CCD (piloté par Gen5) - Inversé - Lecteur de plaque
Micro-dissecteur laser :
- Microdissecteur PALM Zeiss - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - inversé
Microscopie confocale :
- Fluoview FV10i Olympus (2010) - inversé
- LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - inversé
- TCS SP5 Multi-Photon Leica - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - droit
- TCS SP8 STED Leica (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - inversé
Spinning disk :
- Spinning Disk UltraviewVox Perkin Elmer (2010) - statif inversé Eclispse TiE Nikon - Caméra Hamamatsu EM-CCD (piloté par Volocity)
Feuille de lumière :
- Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur MVX10 Olympus (2014) (piloté par Inscoper)
Logiciels d'analyses :
- Volocity 6.3 (PerkinElmer)
- Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
- Institut de Biologie de Valrose (iBV) - Nice
-
PERSONNEL
Baptiste Monterroso
Responsable service Imagerie (PRISM)
baptiste.monterroso@univ-cotedazur.fr
04.89.15.06.81Sameh Ben Aïcha
Ingénieur service Imagerie (PRISM)
sameh.ben-aicha@univ-cotedazur.fr
04.89.15.06.80Florence Besse
Responsable scientifique
florence.besse@univ-cotedazur.fr
04.89.15.07.45Maximilian Furthauer
Responsable scientifique
maximilian.furthauer@univ-cotedazur.fr
04.89.15.08.35EQUIPEMENTS
Microscopie plein champ :
- Axiocolor : AxioPlan Zeiss / Caméra couleur pour coloration
- Axiofluo : AxioPlan Zeiss / Caméra noir & blanc pour la fluorescence
Vidéo-microscopie :
- Videobserver : AxioObserver Zeiss (2011) - Caméras Andor EMCCD iXion 897 et sCMOS Neo (piloté par Metamorph)
- Timelaps : Axiovert200M Zeiss (2004) - Caméra Andor sCMOS Neo (piloté par Metamoprh)
Microscopie confocale :
- TCS SPE Leica (2007)
- TCS SP5 Leica (2011) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant
- LSM710 Zeiss (2012) - détecteur spectral
- LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - laser Bi-photon (MaiTai) - détecteur NDD en fluorescence et transmission
- LSM880 Zeiss (2018) - détecteur interne GaAsp - détecteur fast Airyscan - platine piezo
Spinning disk :
- Spinning disk: Olympus/Andor/Yokogawa X1 (2010) - Dual cam module (EM-CCD) - 3D rapide - platine piezo
- SPIN-FRAP-TIRF: Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) - module de photomanipulation (Ilas2) - caméra sCMOS zyla 4.2+
Feuille de lumière :
- Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur Z16 APOA Leica (2019) (piloté par µManager)
Logiciels d'analyses :
- Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
- Centre Méditerranéen de Médecine Moléculaire (C3M) - Nice
-
PERSONNEL
Marie Irondelle
Responsable service Imagerie
marie.irondelle@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.58Anne Doye
Ingénieur service Imagerie
anne.doye@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.63EQUIPEMENTS
Microscopie plein champ :
- DM5500B Leica (2007) - Caméra Hamamatsu CCD Orca ER (piloté par LAS AF) - droit
- Eclipse Ci-S Nikon (2016) - pour coupe histologique - droit
Vidéo-microscopie :
- Axiovert200M (2006) - Caméra Photometrics Coolsnap HQ2 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
- AM TIRF Leica (2007) - caméra Leica DFC360FX - platine motorisé (piloté par LAS AF) - inversé
- IncuCyte Essen Bioscience (2017) - lecteur de plaque
Micro-dissecteur laser :
- Microdissecteur PALM Zeiss (2010) - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - inversé
Microscopie confocale :
- Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien de focus, mosaïques
Logiciels d'analyses :
- Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
- Institut de la Mer de Villefranche (IMEV) - Villefranche
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PERSONNEL PIM - service Imagerie
Sébastien Schaub
Responsable service Imagerie (PIM)
sebastien.schaub@imev-mer.frEQUIPEMENTS
Microscopie plein champ manuelle :
- BX51 Olympus (2013) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
- Imager A2 Zeiss (2014) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
- Stéréomicroscope Zeiss Stemi 508 (2019) - Caméra AxioCam 305 color (brightfield, oblique)
- Stéréomicroscope Leica M205FA (2014) - Caméra Leica MC170 HD (brightfield,oblique, fluorescence)
Microscopie plein champ motorisée :
- Axiovert200M Zeiss (2013) - Camera Hamamatsu Fusion BT (brightfield, fluo) (piloté par Metamoprh) - inversé
- AxioObserver 7 Zeiss (2019) - Caméra Hamamatsu Flash 4 v3 (piloté par Zen Blue) - inversé
- AxioVert100TV Zeiss (1995, upgrade 2008)
Microscopie confocale :
- TCS SP8 Leica (2015) - détecteur hybride - inversé
- Stellaris 5 Leica (2020) - laser blanc - Tau Sense
Logiciels d'analyses :
- Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
- MATLAB
PERSONNEL PIQV - service d'imagerie quantitative
Amanda Elineau
Responsable service Imagerie quantitative (PIQV)
amanda.elineau@imev-mer.fr
04.93.76.38.51Laëticia Jalabert
Assistant Ingénieur service Imagerie quantitative (PIQV)
laeticia.jalabert@imev-mer.fr
04.93.76.38.40Lucas Courchet
Technicien service Imagerie quantitative (PIQV)
lucas.courchet@imev-mer.frMarc Picheral
Responsable scientifique (PIQV)
marc.picheral@imev-mer.fr04.93.76.38.08EQUIPEMENTS PIQV - service d'imagerie quantitative
Acquisition de plancton :
- 2 FlowCam
- 4 ZooScan
- 4 Underwater Vision Profiler 5
Logiciels d'analyses:
En cours de mise à jour
- Centre Commun de Microscopie Appliquée (CCMA) - Nice
-
PERSONNEL
Sandra Lacas-Gervais
Responsable scientifique service imagerie électronique
sandra.lacas-gervais@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.92François Orange
Ingénieur responsable technique du MEB
francois.orange@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.93Sophie Pagnotta
Ingénieur responsable technique du MET
sophie.pagnotta@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.90Christelle Boscagli
technicienne responsable équipements et préparation des échantillons
christelle.boscagli@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.94EQUIPEMENTS
Microscopie plein champ :
- Leica Thunder Imager 3D avec statif inversé Dmi8 Leica (2020) entièrement motorisé doté du computational clearing et de déconvolution intégrée
- Institut de Recherche sur le Cancer et le Vieillissement (IRCAN) - Nice
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PERSONNEL PICMI
Soline Estrach
Responsable scientifique service imagerie (PICMI)
soline.estrach@univ-cotedazur.fr
04.93.37.70.93Aaron Mendez-Bermudez
Ingénieur service imagerie (PICMI)
aaron.mendez-bermudez@univ-cotedazur.fr
04.93.37.70.17EQUIPEMENTS PICMI
Vidéo-microscopie :
- AxioObserver Z1 Zeiss (2010) - Caméra couleur Zeiss AxioCam Icc1 et Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 LT C11440 - platine motorisée (piloté par Zen 2) - inversé
- Axiovert 200M Zeiss - Caméra Photometrics EMCCD Cascade II - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
- AxioImager Z2 Zeiss (2011) - Caméra CoolCube CCD HAD - platine motorisée (piloté par MetaSystems) - inversé - système d'analyse pour la cytogénétique : caryotypage automatique, analyse de FISH
- DeltaVision Olympus (2013) - Caméra CCD sCMOS - platine motorisée (piloté par SoftWorx) - inversé
Microscopie confocale :
- LSM800 Zeiss (2018) - platine manuelle - droit
- LSM880 Zeiss (2018) - détecteur spectral GaAsp - surplatine piezo - module fast Airyscan - inversé
Feuille de lumière :
- LSFM Z.1 Zeiss (2018) - Caméras sCMOS PCO.edge
Logiciels d'analyses :
- Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
- Institut Sophia Agrobiotech INRAE (ISA) - Sophie Antipolis
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PERSONNEL
Olivier Pierre
Responsable service imagerie (SPIBOC)
olivier.pierre@sophia.inra.fr
04.92.38.64.58Janice de Almeida-Engler
Responsable scientifique service imagerie (SPIBOC)
janice.de-almeida@inrae.fr
04.92.38.64.59EQUIPEMENTS
Microtomes :
- Vibratome HM650V-Microm Microtech
- Microtome HM360-Microm Microtech
- Microtome Rotatif-Jung
Loupes binoculaires :
- MZFLII Leica - Caméra AxiocamICc1 (piloté par AxioVisio 4.8LE)
Microscopie plein champ :
- VHX-2000 Keyence (2013) - Caméra numérique 3CCD (piloté par VHX-2000 Communication Software 2.319)
- AxioZoom Zeiss (2018) - module Apotome2
- AxioImagerZ1 Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam MRm - Apotome (piloté par Zen 2012 Pro) - inversé
- AxioPlan Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam couleur (piloté par Zen) - droit
Microscopie confocale :
- LSM880 Zeiss (2015 upgrade 2017) - détecteur GaAsp - module fast Airyscan - inversé
Logiciels d'analyses :
- Amira Extension XImagePAQ (Thermo Fisher)
- Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)