Nos plateaux

           
Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire (IPMC) - Sophia Antipolis
IPMC UMR7275/UNS
660 Route des Lucioles
Sophia Antipolis
06560 Valbonne

 

 

PERSONNEL

Samah Rekima
Ingénieur service Imagerie
rekima@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89

Sophie Abélanet
Ingénieur service Imagerie
abelanet@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89

 

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • Axioplan2 Imaging Carl Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu N&B CCD Orca ER - Logiciel µManager - Droit
  • Axiovert200M Carl Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 - platine motorisée - Logiciel Metamorph - Inversé
  • Axio Observer Carl Zeiss (2007) - Caméra EMCCD Cascade 512 Photometrics - Logiciel MetaFluor - Inversé

Microscopie plein champ automatisée : 

  • Cytation 5 Biotek (2015) - Caméra Grasshopper CCD - Logiciel Gen5 - Lecteur de plaque - Inversé
  • Image Xpress pro Molecular Devices (2023)

Micro-dissecteur laser : 

  • Microdissecteur PALM Carl Zeiss sur AxioObserver Z1 - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - Inversé

Microscopie confocale :

  • LSM780 Carl Zeiss (2012) - détecteur spectral et GaAsp - Logiciel ZEN - Inversé
  • TCS SP5 Multi-Photon Leica Microsystems (2012/2020) - détecteurs hybrides NDD- surplatine piezo - scanner résonant - Laser Chameleon UltraII et OPO- Droit
  • TCS SP8 STED Leica Microsystems (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant  - Inversé

Spinning disk :

  • Spinning Disk UltraviewVox Perkin Elmer (2010) - Eclispse TiE Nikon - Caméra Hamamatsu EM-CCD -  Logiciel Volocity - Inversé

Feuille de lumière : 

  • Ultramacroscope à feuille de lumière Home-Made sur MVX10 Olympus (2014) - Caméra sCMOS Flash4 Hamamatsu - Banc 4 lasers Oxxius - Logiciel Inscoper

Logiciels d'analyses :

  • Volocity 6.3 (PerkinElmer)
  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
           
Institut de Biologie de Valrose (iBV) - Nice
UMR CNRS 7277- Inserm U1091- UNS
Faculté des sciences - Parc Valrose 
06108 Nice cedex 2

PERSONNEL

Sameh Ben Aïcha
Responsable service Imagerie (PRISM)
sameh.ben-aicha@univ-cotedazur.fr
04.89.15.06.80

Robert Arkowitz
Responsable scientifique
Robert.ARKOWITZ@univ-cotedazur.fr
04 89 15 0740 

Maximilian Furthauer
Responsable scientifique
maximilian.furthauer@univ-cotedazur.fr
04.89.15.08.35

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • Axiocolor : AxioPlan Carl Zeiss / Caméra couleur pour coloration
  • Axiofluo : AxioPlan Carl Zeiss / Caméra noir & blanc pour la fluorescence

Vidéo-microscopie : 

  • Videobserver : AxioObserver Carl Zeiss (2011) - Caméras Andor EMCCD iXion 897 et sCMOS Neo - Logiciel Metamorph
  • Video-microscope Axiovert200M Carl Zeiss (2004) - Caméra Andor sCMOS Neo - Logiciel Metamorph
  • Lattice SIM Elyra7 Lattice SIM Carl Zeiss (2023)

Microscopie confocale :

  • TCS SPE Leica Microsystems (2007)
  • TCS SP5 Leica Microsystems (2011) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - Inversé
  • LSM710 Carl Zeiss (2012) - détecteur spectral - Inversé
  • LSM780 Carl Zeiss (2012) - détecteur spectral et GaAsp - laser Bi-photon (MaiTai) - détecteur NDD en fluorescence et transmission
  • LSM880 Carl Zeiss (2018) - Fast Airyscan - détecteur interne GaAsp - Surplatine piezo - Inversé
  • LSM980 Carl Zeiss (2024)

Spinning disk :

  • Spinning disk: Olympus/Andor/Yokogawa X1 (2010) - Module Dual cam (EM-CCD) - 3D rapide - surplatine piezo
  • SPIN-FRAP-TIRF: Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) - module de photomanipulation (Ilas2) - caméra sCMOS zyla 4.2+

Feuille de lumière : 

  • Lightsheet Z7 Carl Zeiss (2023)

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Centre Méditerranéen de Médecine Moléculaire (C3M) - Nice
C3M
Bâtiment Universitaire ARCHIMED
151 route Saint Antoine de Ginestière
BP 2 3194
06204 Nice Cedex 3

PERSONNEL

Marie Irondelle
Responsable service Imagerie
marie.irondelle@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.58

Anne Doye
Ingénieur service Imagerie
anne.doye@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.63

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • Eclipse Ci-S Nikon (2016) - pour coupe histologique - droit

Vidéo-microscopie : 

  • Axiovert 200M Carl Zeiss (2006) - Caméra Coolsnap HQ2 Photometrics - platine motorisée - Logiciel Metamorph - Inversé
  • AM TIRF Leica Microsystems (2007) - Caméra DFC360FX - platine motorisée - Logiciel LAS AF - Inversé 

Micro-dissecteur laser : 

  • Microdissecteur PALM Zeiss (2010) - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - inversé

Microscopie confocale :

  • Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien tde focus, mosaïques

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Institut de la Mer de Villefranche (IMEV) - Villefranche
Observatoire Océanologique de Villefranche-sur-Mer
Port de la Darse
181, Chemin du Lazaret
06230 Villefranche sur mer Cedex

PERSONNEL PIM - service Imagerie 

Sébastien Schaub
Responsable service Imagerie (PIM)
sebastien.schaub@imev-mer.fr

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ manuelle :

  • BX51 Olympus (2013) - Camera Axiocam 506 color Carl Zeiss (brightfield, Darkfield, fluo) - Droit
  • Imager A2 Zeiss  (2014) - Camera Axiocam 506 color Carl Zeiss (brightfield, Darkfield, fluo) - Droit
  • Stéréomicroscope Zeiss Stemi 508 (2019) - Caméra AxioCam 305 color Carl Zeiss (brightfield, oblique)
  • Stéréomicroscope M205FA Leica Microsystems (2014) - Caméra MC170 HD Leica Microsystems (brightfield,oblique, fluorescence)

Microscopie plein champ motorisée :

  • Axiovert200M Carl Zeiss (2013) - Camera Fusion BT Hamamatsu (brightfield, fluo) - Logiciel Metamoprh - Inversé
  • AxioObserver 7 Carl Zeiss (2019) - Caméra Flash 4 v3 Hamamatsu - Logiciel ZEN Blue - Inversé

Microscopie confocale :

  • TCS SP8 Leica Microsystems (2015) - Détecteurs hybrides - Inversé
  • Stellaris 5 Leica Microsystems (2020) - Laser blanc - Tau Sense

Feuille de lumière : 

  • Lightsheet LS2 Viventis / Leica Microsystems (2023)

Microscopie électronique à balayage :

  • Microscope électronique environnemental Hitashi 4000+ (2021)
 

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 10.0 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
  • MATLAB

PERSONNEL PIQV - service d'imagerie quantitative

Manoela Brandão
Responsable service Imagerie quantitative (PIQV)
manoela.brandao@imev-mer.fr
04.93.76.38.51

Marc Picheral
Responsable scientifique (PIQV)
marc.picheral@imev-mer.fr
04.93.76.38.08

EQUIPEMENTS PIQV - service d'imagerie quantitative

Acquisition de plancton : 

  • 2 Imaging FlowCytobot (IFCB)
  • 4 FlowCam
  • 7 ZooScan
  • 4 Underwater Vision Profiler (UVP5)
  • 18 Underwater Vision Profiler 6 Low Power (UVP6-LP)
  • 4 Underwater Vision Profiler 6 High Frequency (UVP6-HF)

Logiciels d'analyses: 

Zooprocess

           
Centre Commun de Microscopie Appliquée (CCMA) - Nice
CCMA
UFR Sciences
Parc Valrose
28, avenue Valrose
06108 Nice Cedex 2

PERSONNEL

Sandra Lacas-Gervais
Responsable scientifique service imagerie électronique
sandra.lacas-gervais@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.92

François Orange
Ingénieur responsable technique du MEB
francois.orange@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.93

Sophie Pagnotta
Ingénieur responsable technique du MET
sophie.pagnotta@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.90

Christelle Boscagli
technicienne responsable équipements et préparation des échantillons
christelle.boscagli@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.94

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ  :

  • Thunder Imager 3D sur DMI8 Leica Microsystems (2020) - computational clearing et déconvolution intégrée - Inversé

           
Institut de Recherche sur le Cancer et le Vieillissement (IRCAN) - Nice
UMR CNRS 7284- INSERM U1081-UNS
Faculté de Médecine Pasteur
Avenue de Valombrose 
06107 NICE Cedex 2

PERSONNEL PICMI

Soline Estrach
Responsable scientifique service imagerie (PICMI)
soline.estrach@univ-cotedazur.fr
04.89.15.36.91

Aaron Mendez-Bermudez
Ingénieur service imagerie (PICMI)
aaron.mendez-bermudez@univ-cotedazur.fr

Serge Bauwens
Ingénieur service imagerie (PICMI)
serge.bauwens@univ-cotedazur.fr
Sabrina Pisano
Ingénieur service imagerie (PICMI & AFM)
sabrina.pisano@univ-cotedazur.fr
Frédéric Brau
Responsable des plateformes et Ingénieur service imagerie (PICMI)
frederic.brau@cnrs.fr
Laurent Grosse
Ingénieur service imagerie (PICMI - Light Sheet)
laurent.grosse@univ-cotedazur.fr

EQUIPEMENTS PICMI

Microscopie plein champ : 

  • AxioImager Z2 Zeiss (2011) - Caméra sCMOS AxioCam705 mono  - Platine motorisée 8 lames - Logiciel ZEN - Droit
  • DM4000B Leica Microsystems - Caméra couleur  DFC 425C - Droit

Vidéo-microscopie : 

  • AxioObserver Z1 Carl Zeiss (2010) - Caméra couleur Zeiss AxioCam Icc1 et Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 LT C11440 - Platine motorisée - Contrôle CO2 et température - Logiciel ZEN - Inversé
  • Axiovert 200M Carl Zeiss - Caméra Photometrics EMCCD Cascade II - Platine motorisée - Contrôle CO2 et température - Logiciel Metamorph - Inversé
  • DeltaVision Elite TIRFM Olympus (2013) - Caméra sCMOS PCO Edge 5.5- Platine motorisée - Contrôle CO2 et température - Logiciel SoftWorx - Inversé
 

Microscopie confocale :

  • LSM800 Carl Zeiss (2018) - Platine motorisée - Logiciel ZEN - Droit
  • LSM880 Zeiss (2018) - Fast Airyscan - détecteur spectral GaAsp - Platine motorisée - Surplatine piezo - Logiciel ZEN - Inversé

Feuille de lumière : 

  • Lightsheet Z1 Carl Zeiss (2018)

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Institut Sophia Agrobiotech INRAE (ISA) - Sophie Antipolis
Institut Sophia Agrobiotech INRAE PACA
400 route des chappes
BP 167
06903 Sophia Antipolis Cedex

PERSONNEL

Olivier Pierre
Responsable service imagerie (SPIBOC)
olivier.pierre@inrae.fr
04.92.38.64.58

Julie Soltys
Ingénieur service imagerie (SPIBOC)
julie.soltys@inrae.fr
04.92.38.64.58

Janice de Almeida-Engler
Responsable scientifique service imagerie (SPIBOC)
janice.de-almeida@inrae.fr
04.92.38.64.59

EQUIPEMENTS

Microtomes :

  • Vibratome VT1200S Leica
  • Microtome HM360-Microm Microtech
  • Microtome Rotatif-Jung

Loupes binoculaires :

  • MZFLII Leica Microsystems- Caméra AxiocamICc1 - Logiciel ZEN
  • StéréoDiscvoveryv12 Carl Zeiss – Caméra couleur CCD AxioCam - Logiciel ZEN

Microscopie plein champ :

  • VHX-2000 Keyence (2013) - digital microscope - CCD color camera with 20x to 6000x magnification capacity -  Logiciel Communication Software
  • AxioZoom Carl Zeiss (2018) - module Apotome2 - motorized stage with Orca Flash4LT & color coded sCMOS AxioCam305
  • AxioImagerZ1 Carl Zeiss (2007) - Apotome2- Platine motorisée - Caméra N&B Orca Flash4LT Hamamatsu - Caméra N&B AxioCam MRm - Logiciel ZEN - Inversé
  • AxioPlan Carl Zeiss (2007) - Caméra couleur sCMOS Axiocam705 - Logiciel ZEN - Droit

Microscopie confocale : 

  • LSM880 Carl Zeiss (2015 upgrade 2017) - Fast Airyscan - Détecteurs GaAsp - Inversé

Logiciels d'analyses :

  • Amira Extension XImagePAQ (Thermo Fisher)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)