Nos plateaux

           
Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire (IPMC) - Sophia Antipolis
IPMC UMR7275/UNS
660 Route des Lucioles
Sophia Antipolis
06560 Valbonne

 

 

PERSONNEL

Frédéric Brau
Responsable service Imagerie
brau@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89

Sophie Abélanet
Ingénieur service Imagerie
abelanet@ipmc.cnrs.fr
04.93.95.77.83-87-88-89

 

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • Axioplan2 Imaging Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu N&B CCD Orca ER (piloté par µManager) - droit
  • Axiovert200M Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • Axio Observer Zeiss (2007) - Caméra EMCCD Cascade 512 Photometrics (piloté par MetaFluor)

Microscopie plein champ automatisée : 

  • Cytation 5 Biotek (2015) - Caméra Grasshopper CCD (piloté par Gen5) - Inversé - Lecteur de plaque

Micro-dissecteur laser : 

  • Microdissecteur PALM Zeiss - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - inversé

Microscopie confocale :

  • Fluoview FV10i Olympus (2010) - inversé
  • LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - inversé
  • TCS SP5 Multi-Photon Leica - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - droit
  • TCS SP8 STED Leica (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant  - inversé

Spinning disk :

  • Spinning Disk UltraviewVox Perkin Elmer (2010) - statif inversé Eclispse TiE Nikon - Caméra Hamamatsu EM-CCD (piloté par Volocity) 

Feuille de lumière : 

  • Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur MVX10 Olympus (2014) (piloté par Inscoper)

Logiciels d'analyses :

  • Volocity 6.3 (PerkinElmer)
  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
           
Institut de Biologie de Valrose (iBV) - Nice
UMR CNRS 7277- Inserm U1091- UNS
Faculté des sciences - Parc Valrose 
06108 Nice cedex 2

PERSONNEL

Baptiste Monterroso
Responsable service Imagerie (PRISM)
baptiste.monterroso@univ-cotedazur.fr
04.89.15.06.81

Sameh Ben Aïcha
Ingénieur service Imagerie (PRISM)
sameh.ben-aicha@univ-cotedazur.fr
04.89.15.06.80

Florence Besse
Responsable scientifique
florence.besse@univ-cotedazur.fr
04.89.15.07.45

Maximilian Furthauer
Responsable scientifique
maximilian.furthauer@univ-cotedazur.fr
04.89.15.08.35

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • Axiocolor : AxioPlan Zeiss / Caméra couleur pour coloration
  • Axiofluo : AxioPlan Zeiss / Caméra noir & blanc pour la fluorescence

Vidéo-microscopie : 

  • Videobserver : AxioObserver Zeiss (2011) - Caméras Andor EMCCD iXion 897 et sCMOS Neo (piloté par Metamorph)
  • Timelaps : Axiovert200M Zeiss (2004) - Caméra Andor sCMOS Neo (piloté par Metamoprh) 

Microscopie confocale :

  • TCS SPE Leica (2007)
  • TCS SP5 Leica (2011) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant
  • LSM710 Zeiss (2012) - détecteur spectral
  • LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - laser Bi-photon (MaiTai) - détecteur NDD en fluorescence et transmission
  • LSM880 Zeiss (2018) - détecteur interne GaAsp - détecteur fast Airyscan - platine piezo

Spinning disk :

  • Spinning disk: Olympus/Andor/Yokogawa X1 (2010) - Dual cam module (EM-CCD) - 3D rapide - platine piezo
  • SPIN-FRAP-TIRF: Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) - module de photomanipulation (Ilas2) - caméra sCMOS zyla 4.2+

Feuille de lumière : 

  • Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur Z16 APOA Leica (2019) (piloté par µManager)

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Centre Méditerranéen de Médecine Moléculaire (C3M) - Nice
C3M
Bâtiment Universitaire ARCHIMED
151 route Saint Antoine de Ginestière
BP 2 3194
06204 Nice Cedex 3

PERSONNEL

Marie Irondelle
Responsable service Imagerie
marie.irondelle@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.58

Anne Doye
Ingénieur service Imagerie
anne.doye@univ-cotedazur.fr
04.89.06.42.63

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ :

  • DM5500B Leica (2007) - Caméra Hamamatsu CCD Orca ER (piloté par LAS AF) - droit
  • Eclipse Ci-S Nikon (2016) - pour coupe histologique - droit

Vidéo-microscopie : 

  • Axiovert200M (2006) - Caméra Photometrics Coolsnap HQ2 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • AM TIRF Leica (2007) - caméra Leica DFC360FX - platine motorisé (piloté par LAS AF) - inversé 
  • IncuCyte Essen Bioscience (2017) - lecteur de plaque

Micro-dissecteur laser : 

  • Microdissecteur PALM Zeiss (2010) - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) - inversé

Microscopie confocale :

  • Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien de focus, mosaïques

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Institut de la Mer de Villefranche (IMEV) - Villefranche
Observatoire Océanologique de Villefranche-sur-Mer
Port de la Darse
181, Chemin du Lazaret
06230 Villefranche sur mer Cedex

PERSONNEL PIM - service Imagerie 

Sébastien Schaub
Responsable service Imagerie (PIM)
sebastien.schaub@imev-mer.fr

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ manuelle :

  • BX51 Olympus (2013) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
  • Imager A2 Zeiss  (2014) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
  • Stéréomicroscope Zeiss Stemi 508 (2019) - Caméra AxioCam 305 color (brightfield, oblique)
  • Stéréomicroscope Leica M205FA (2014) - Caméra Leica MC170 HD (brightfield,oblique, fluorescence)

Microscopie plein champ motorisée :

  • Axiovert200M Zeiss (2013) - Camera Hamamatsu Fusion BT (brightfield, fluo) (piloté par Metamoprh) - inversé
  • AxioObserver 7 Zeiss (2019) - Caméra Hamamatsu Flash 4 v3 (piloté par Zen Blue) - inversé
  • AxioVert100TV Zeiss (1995, upgrade 2008)

Microscopie confocale :

  • TCS SP8 Leica (2015) - détecteur hybride - inversé
  • Stellaris 5 Leica (2020) - laser blanc - Tau Sense
 

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
  • MATLAB

PERSONNEL PIQV - service d'imagerie quantitative

Amanda Elineau
Responsable service Imagerie quantitative (PIQV)
amanda.elineau@imev-mer.fr
04.93.76.38.51

Laëticia Jalabert
Assistant Ingénieur service Imagerie quantitative (PIQV)
laeticia.jalabert@imev-mer.fr
04.93.76.38.40

Lucas Courchet
Technicien service Imagerie quantitative (PIQV)
lucas.courchet@imev-mer.fr

Marc Picheral
Responsable scientifique (PIQV)
marc.picheral@imev-mer.fr04.93.76.38.08

EQUIPEMENTS PIQV - service d'imagerie quantitative

Acquisition de plancton : 

  • 2 FlowCam
  • 4 ZooScan
  • 4 Underwater Vision Profiler 5

Logiciels d'analyses: 

En cours de mise à jour

           
Centre Commun de Microscopie Appliquée (CCMA) - Nice
CCMA
UFR Sciences
Parc Valrose
28, avenue Valrose
06108 Nice Cedex 2

PERSONNEL

Sandra Lacas-Gervais
Responsable scientifique service imagerie électronique
sandra.lacas-gervais@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.92

François Orange
Ingénieur responsable technique du MEB
francois.orange@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.93

Sophie Pagnotta
Ingénieur responsable technique du MET
sophie.pagnotta@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.90

Christelle Boscagli
technicienne responsable équipements et préparation des échantillons
christelle.boscagli@univ-cotedazur.fr
04.89.15.00.94

EQUIPEMENTS

Microscopie plein champ  :

  • Leica Thunder Imager 3D avec statif inversé Dmi8 Leica (2020) entièrement motorisé doté du computational clearing et de déconvolution intégrée

           
Institut de Recherche sur le Cancer et le Vieillissement (IRCAN) - Nice
UMR CNRS 7284- INSERM U1081-UNS
Faculté de Médecine Pasteur
Avenue de Valombrose 
06107 NICE Cedex 2

PERSONNEL PICMI

Soline Estrach
Responsable scientifique service imagerie (PICMI)
soline.estrach@univ-cotedazur.fr
04.93.37.70.93

Aaron Mendez-Bermudez
Ingénieur service imagerie (PICMI)
aaron.mendez-bermudez@univ-cotedazur.fr
04.93.37.70.17

Serge Bauwens
Ingénieur service imagerie (PICMI)
serge.bauwens@univ-cotedazur.fr
04.93.37.70.17

EQUIPEMENTS PICMI

Vidéo-microscopie : 

  • AxioObserver Z1 Zeiss (2010) - Caméra couleur Zeiss AxioCam Icc1 et Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 LT C11440 - platine motorisée (piloté par Zen 2) - inversé 
  • Axiovert 200M Zeiss - Caméra Photometrics EMCCD Cascade II - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • AxioImager Z2 Zeiss (2011) - Caméra CoolCube CCD HAD - platine motorisée (piloté par MetaSystems) - inversé - système d'analyse pour la cytogénétique : caryotypage automatique, analyse de FISH
  • DeltaVision Olympus (2013) - Caméra CCD sCMOS - platine motorisée (piloté par SoftWorx) - inversé

Microscopie confocale :

  • LSM800 Zeiss (2018) - platine manuelle - droit
  • LSM880 Zeiss (2018) - détecteur spectral GaAsp - surplatine piezo - module fast Airyscan - inversé

Feuille de lumière : 

  • LSFM Z.1 Zeiss (2018) - Caméras sCMOS PCO.edge

Logiciels d'analyses :

  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)

           
Institut Sophia Agrobiotech INRAE (ISA) - Sophie Antipolis
INRAE PACA
400 route des chappes
BP 167
06903 Sophia Antipolis Cedex

PERSONNEL

Olivier Pierre
Responsable service imagerie (SPIBOC)
olivier.pierre@sophia.inra.fr
04.92.38.64.58

Janice de Almeida-Engler
Responsable scientifique service imagerie (SPIBOC)
janice.de-almeida@inrae.fr
04.92.38.64.59

EQUIPEMENTS

Microtomes :

  • Vibratome HM650V-Microm Microtech
  • Microtome HM360-Microm Microtech
  • Microtome Rotatif-Jung

Loupes binoculaires :

  • MZFLII Leica - Caméra AxiocamICc1 (piloté par AxioVisio 4.8LE)

Microscopie plein champ :

  • VHX-2000 Keyence (2013) - Caméra numérique 3CCD (piloté par VHX-2000 Communication Software 2.319)
  • AxioZoom Zeiss (2018) - module Apotome2
  • AxioImagerZ1 Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam MRm - Apotome (piloté par Zen 2012 Pro) - inversé
  • AxioPlan Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam couleur (piloté par Zen) - droit

Microscopie confocale : 

  • LSM880 Zeiss (2015 upgrade 2017) - détecteur GaAsp - module fast Airyscan - inversé

Logiciels d'analyses :

  • Amira Extension XImagePAQ (Thermo Fisher)
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)