Nos technologies

                      
Plein Champ




Cette rubrique rassemble les dispositifs à épifluorescence offrant la possibilité de capturer des images d'échantillons fixés ou vivants.

 


Stations de capture d'images :
 

  • Axioplan2 Imaging Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu N&B CCD Orca ER (piloté par µManager) – droit
  • Axiocolor : AxioPlan Zeiss / Caméra couleur pour coloration
  • Axiofluo : AxioPlan Zeiss / Caméra noir & blanc pour la fluorescence
  • DM5500B Leica (2007) - Caméra Hamamatsu CCD Orca ER (piloté par LAS AF) – droit
  • Eclipse Ci-S Nikon (2016) - pour coupe histologique - droit
  • BX51 Olympus (2013) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
  • Imager A2 Zeiss  (2014) - Camera Zeiss Axiocam 506 color (brightfield, Darkfield, fluo) - droit
  • Stéréomicroscope Zeiss Stemi 508 (2019) - Caméra AxioCam 305 color (brightfield, oblique)
  • Stéréomicroscope Leica M205FA (2014) - Caméra Leica MC170 HD (brightfield,oblique, fluorescence)
  • VHX-2000 Keyence (2013) - Caméra numérique 3CCD (piloté par VHX-2000 Communication 2.319)
  • AxioPlan Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam couleur (piloté par Zen) - droit



Systèmes de capture avec des logiciels ou modules spécialisés :
 
  • AM TIRF Leica (2007) - caméra Leica DFC360FX - platine motorisé (piloté par LAS AF) - inversé
  • Leica Thunder Imager 3D avec statif inversé Dmi8 Leica entièrement motorisé doté du computational clearing et de déconvolution intégrée
  • AxioImager Z2 Zeiss (2011) - Caméra CoolCube CCD HAD - platine motorisée (piloté par MetaSystems) - inversé - système d'analyse pour la cytogénétique : caryotypage automatique, analyse de FISH
  • AxioZoom Zeiss (2018) – module Apotome2
  • AxioImagerZ1 Zeiss (2007) - Caméra Zeiss AxioCam MRm - Apotome (piloté par Zen 2012 Pro) – inversé



Systèmes de vidéo-microscopie :
 
  • Axiovert200M Zeiss (2003) - Caméra Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • Axio Observer Zeiss (2007) - Caméra EMCCD Cascade 512 Photometrics (piloté par MetaFluor)
  • Cytation 5 Biotek (2015) - Caméra Grasshopper CCD (piloté par Gen5) - Inversé - Lecteur de plaque
  • Videobserver : AxioObserver Zeiss (2011) - Caméras Andor EMCCD iXion 897 et sCMOS Neo (piloté par Metamorph)
  • Timelaps : Axiovert200M Zeiss (2004) - Caméra Andor sCMOS Neo (piloté par Metamoprh)
  • Axiovert200M (2006) - Caméra Photometrics Coolsnap HQ2 - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • IncuCyte Essen Bioscience (2017) – lecteur de plaque
  • Axiovert200M Zeiss (2013) - Camera Hamamatsu Fusion BT (brightfield, fluo) (piloté par Metamoprh) - inversé
  • AxioObserver 7 Zeiss (2019) - Caméra Hamamatsu Flash 4 v3 (piloté par Zen Blue) – inversé
  • AxioVert100TV Zeiss (1995, upgrade 2008)
  • AxioObserver Z1 Zeiss (2010) - Caméra couleur Zeiss AxioCam Icc1 et Hamamatsu sCMOS Orca Flash 4.0 LT C11440 - platine motorisée (piloté par Zen 2) - inversé
  • Axiovert 200M Zeiss - Caméra Photometrics EMCCD Cascade II - platine motorisée (piloté par Metamorph) - inversé
  • DeltaVision Olympus (2013) - Caméra CCD sCMOS - platine motorisée (piloté par SoftWorx) - inversé
Micro-dissecteur laser
  • Microdissecteur PALM Zeiss - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) – inversé
  • Microdissecteur PALM Zeiss (2010) - Caméra couleur MRC5 - Caméra N&B mRm - platine motorisée (piloté par Axiovision et Palmrobo) – inversé
Feuille de lumière
  • Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur MVX10 Olympus (2014) (piloté par Inscoper)
  • Ultramacroscope à feuillet de lumière Home-Made sur Z16 APOA Leica (2019) (piloté par µManager)
  • LSFM Z.1 Zeiss (2018) - Caméras sCMOS PCO.edge
           
Confocal



La microscopie confocale permet d'accéder à l'imagerie tridimensionnelle des échantillons marqués en fluorescence ou à de l'imagerie en réflexion (biomatériaux), en ayant la possibilité de combiner ces deux approches.

La plateforme MICA met à votre disposition deux approches de la microscopie confocale. Si la flexibilité de la technologie à balayage laser répond à un large besoin d'imagerie multi-couleurs en biologie, l'approche "spinning disk" (à disque tournant) vous permettra d'observer des phénomènes rapides en limitant la photo-toxicité sur vos échantillons vivants.

MICROSCOPES CONFOCAUX A BALAYAGE LASER


Systèmes faciles à prendre en main :
 
  • Fluoview FV10i Olympus (2010) - inversé
  • TCS SPE Leica (2007)


Systèmes plus flexibles : 
  • Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien de focus, mosaïques
  • LSM800 Zeiss (2018) - platine manuelle - droit


Systèmes avec modules spectraux : 
Caractérisation ou détection des signatures des fluorophores sur les échantillons.
Optimisation de l'imagerie multi-couleur (>4 couleurs) en utilisant les signatures individuelles des molécules et la décomposition spectrale du mélange des marquages.
Mesures ioniques (pH...) par imagerie ratiométrique (sondes ioniques avec déplacement de leur spectre d'émission: SNARF).
  • LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - inversé
  • TCS SP5 Multi-Photon Leica - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - droit
  • TCS SP8 STED Leica (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - inversé
  • TCS SP5 Leica (2011) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant
  • LSM710 Zeiss (2012) - détecteur spectral
  • LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - laser Bi-photon (MaiTai) - détecteur NDD en fluorescence et transmission
  • TCS SP8 Leica (2015) - détecteur hybride - inversé
  • Stellaris 5 Leica (2020) - laser blanc - Tau Sense



MICROSCOPES CONFOCAUX A DISQUE TOURNANT
 
  • Spinning Disk UltraviewVox Perkin Elmer (2010) - statif inversé Eclispse TiE Nikon - Caméra Hamamatsu EM-CCD (piloté par Volocity)
  • Spinning disk: Olympus/Andor/Yokogawa X1 (2010) - Dual cam module (EM-CCD) - 3D rapide - platine piezo
  • SPIN-FRAP-TIRF: Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) - module de photomanipulation (Ilas2) - caméra sCMOS zyla 4.2+  
Super-résolution
  • TCS SP8 STED Leica (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - inversé


Systèmes avec modules d'amélioration de la résolution :
 
  • LSM880 Zeiss (2018) - détecteur interne GaAsp - détecteur fast Airyscan - platine piezo
  • LSM880 Zeiss (2018) - détecteur spectral GaAsp - surplatine piezo - module fast Airyscan - inversé
  • LSM880 Zeiss (2015 upgrade 2017) - détecteur GaAsp - module fast Airyscan – inversé
Système de FLIM
  • TCS SP8 STED Leica (2017) - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - inversé
  • Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien de focus, mosaïques
Système FRAP/TIRF
  • Spinning Disk UltraviewVox Perkin Elmer (2010) - statif inversé Eclispse TiE Nikon - Caméra Hamamatsu EM-CCD (piloté par Volocity)
  • SPIN-FRAP-TIRF: Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) - module de photomanipulation (Ilas2) - caméra sCMOS zyla 4.2+
Multi-Photons
  • TCS SP5 Multi-Photon Leica - détecteur hybride - surplatine piezo - scanner résonant - droit
  • LSM780 Zeiss (2011) - détecteur spectral et GaAsp - laser Bi-photon (MaiTai) - détecteur NDD en fluorescence et transmission
           
Logiciels disponible
  • Volocity 6.3 (Perkin Elmer)
  • Imaris 9.6 pour analyses 3D (Bitplane)  
  • Huygens Core/Huygens Remote Manager pour la déconvolution (SVI)
  • Amira Extension XImagePAQ (Thermo Fisher)
  • MATLAB
           
Analyse du plancton
  • 2 FlowCam
  • 4 ZooScan
  • 4 Underwater Vision Profiler 5